趨化因子試劑盒是一種用于檢測趨化因子含量的專業(yè)工具，在生命科學研究和臨床診斷中具有重要意義。趨化因子是一類能夠引導細胞定向遷移的小細胞因子或信號蛋白，通過與趨化因子受體的結合，調控免疫細胞的遷移和定位，參與炎癥反應、免疫應答和組織修復等生理過程。
趨化因子試劑盒基于酶聯(lián)免疫吸附測定法（ELISA）等原理，利用雙抗體夾心法等技術，能夠特異性地檢測樣本中的趨化因子水平。試劑盒中通常包含固相抗體、酶標記抗體、標準品、顯色底物等關鍵組分，通過一系列溫育、洗滌和顯色步驟，最終利用酶標儀測定吸光度，從而計算出樣本中趨化因子的濃度。
1、試劑準備
從試劑盒中取出已包被抗趨化因子抗體的酶標板、趨化因子標準品、酶標記物、底物溶液（A液和B液）、洗滌液、終止液等試劑，使用前讓其在室溫（20-25℃）下平衡，確保實驗結果穩(wěn)定。
若洗滌液是濃縮液，需依照說明書指示，用蒸餾水或去離子水稀釋并充分混勻。
2、樣本采集與處理
血清：使用不含熱原和內毒素的試管，操作過程中避免任何細胞刺激。收集血液后，室溫放置2小時或4℃過夜，然后于1000g離心20分鐘，取上清即可檢測，或將標本放于-20℃或-80℃保存，但應避免反復凍融。
血漿：可用EDTA、肝素或檸檬酸鈉作為抗凝劑，標本采集后30分鐘內于2-8℃、1000g離心20分鐘，或將標本放于-20℃或-80℃保存，避免反復凍融。
細胞上清液：1000g離心20分鐘，取上清即可檢測，或將標本放于-20℃或-80℃保存，避免反復凍融。
組織勻漿：用預冷的PBS（0.01M，pH=7.4）沖洗組織，去除殘留血液，稱重后將組織剪碎。將剪碎的組織與對應體積的PBS（一般按1:9的重量體積比，比如1g的組織樣品對應9mL的PBS，具體體積可根據實驗需要適當調整，并做好記錄。推薦在PBS中加入蛋白酶抑制劑）加入玻璃勻漿器中，在冰上充分研磨。為了進一步裂解組織細胞，可以對勻漿液進行超聲破碎或反復凍融。最后將勻漿液于5000×g離心5-10分鐘，取上清檢測。
3、標準品稀釋與加樣
參照試劑盒說明書，明確標準品的稀釋倍數(shù)與步驟。通常試劑盒提供高濃度標準品母液，需逐步稀釋成不同濃度的標準品溶液。
例如，用移液器精準吸取標準品母液，加入含相應體積稀釋液的無菌EP管。吸10μL標準品母液至90μL稀釋液，輕柔吹打混勻，實現(xiàn)10倍稀釋。依此方法，依次得到不同濃度梯度標準品溶液。每次稀釋后更換吸頭，防止交叉污染。
將稀釋好的標準品溶液依次加入酶標板標準品孔，每孔加100μL。加樣時，移液器垂直懸空于孔上方，緩慢勻速注入，避免產生氣泡，保證加樣準確。為提高準確性和重復性，每個濃度標準品設2-3個復孔。
4、樣本加樣
將處理后的待測樣本（如血清、血漿、細胞培養(yǎng)上清等）加入酶標板樣本孔，每孔100μL。加樣確保樣本無氣泡，加樣量準確。
5、溫育
加樣完成，用封板膜密封酶標板，放入37℃恒溫培養(yǎng)箱溫育60分鐘。嚴格控制溫育時間和溫度，保證實驗結果的準確性。
6、洗滌
溫育結束，小心揭去封板膜，棄去酶標板液體，倒扣在吸水紙上拍干。每孔加350μL洗滌液，靜置1-2分鐘，甩去洗滌液后再次拍干。重復此洗滌步驟5次，徹d去除未結合物質。每次洗滌后確保洗滌液充分去除。
7、顯色
洗滌完成，每孔先加50μL底物A液，再加50μL底物B液，加樣避免產生氣泡，加完輕輕振蕩酶標板混勻。將酶標板放入37℃恒溫培養(yǎng)箱避光顯色15-20分鐘。此時，酶標記物催化底物反應，溶液逐漸顯色，顏色深淺與樣本中趨化因子含量成正比。
8、終止反應
顯色時間到，每孔迅速加50μL終止液，輕輕振蕩混勻，反應隨即終止。加入終止液后立即進行吸光度測定，避免時間過長結果偏差。
9、酶標儀測定
將酶標儀檢測波長設為450nm，若有雙波長功能，同時設參考波長630nm以消除干擾。將終止反應后的酶標板平穩(wěn)放入酶標儀，測定各孔吸光度值（OD值）。讀取數(shù)據時保證酶標板位置正確，確保數(shù)據讀取準確。
10、數(shù)據分析
以標準品濃度為橫坐標，對應平均OD值（扣除空白對照OD值）為縱坐標，用專業(yè)軟件繪制標準曲線。一般采用四參數(shù)擬合曲線方程確保準確性。
根據樣本平均OD值（扣除空白對照OD值），在標準曲線上查找對應濃度值，即為樣本中趨化因子的含量。若樣本檢測前稀釋，根據稀釋倍數(shù)校正濃度，得到原始樣本中趨化因子的實際濃度。
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更新時間：2025-11-25 
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